Рекомендуемая категория для самостоятельной подготовки:
Дипломная работа*
| Код |
562222 |
| Дата создания |
2020 |
| Страниц |
41
|
Мы сможем обработать ваш заказ (!) 19 декабря в 12:00 [мск] Файлы будут доступны для скачивания только после обработки заказа.
|
Содержание
СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ 3
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 5
1.1 Посттравматические процессы в двигательной системе, вызванные
повреждением нервного волокна 5
1.2 Восстановление двигательной функции после повреждения нервного волокна 9
1.3 Электрическая активность скелетных мышц 11
1.4 Роль стромальных клеток в восстановлении нерва 16
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 19
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 19
3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ 21
3.1 Моторный (М-) ответ. 21
3.2 Рефлекторный (H-) ответ 27
3.3 Отношение максимальных амплитуд рефлекторного и моторного ответов икроножной мышцы крысы при подсадке стромальных клеток. 31
ВЫВОДЫ 34
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 35
Фрагмент работы для ознакомления
1.1 Посттравматические процессы в двигательной системе, вызванные повреждением нервного волокна
В середине прошлого века было показано, что пересеченные нервные волокна подвергаются распаду на всем протяжении дистальнее места повреждения [Waller, 1850]. Валлеровская (вторичная) дегенерация нервных волокон дистальнее места их перерезки происходитв любом случае, независимо от сроков соединения концов пересеченного нерва. Уже в первые часы после травмыдистальнее места повреждения возникают морфологические изменения нервных волокон. При повреждении аксона его открытый проксимальный конец подвергается ретракции, несколько утолщается и в течение нескольких минут закрывается за счет слипания мембран [Carbonettoetal., 1987]. На 3-и сутки после повреждения седалищного нерва у крыс на расстоянии 5 ммдистальнее зоны повреждения миелиновые оболочки набухают и разволокняются,[Жук, Калюнов, 1996].
...
1.2 Восстановление двигательной функции после повреждения нервного волокна
При нарушении функции нерва, иннервирующего мышцу, восстановление утраченных свойств осуществляется за счет сохранившихся нервных волокон, которые начинают интенсивно ветвиться. Это ветвление, получившее в литературе название «спраутинг» (от англ. ― tosprout— пускать ростки, ветвиться), лежит в основе формирования компенсаторно- восстановительной реиннервации.Регенерация аксонов периферической нервной системы включает закономерно развертывающуюся сложную последовательность процессов, в ходе которых отросток нейрона активно взаимодействует с глиальными клетками на фоне реактивных изменений,
обусловленных повреждением [Millesi, 1990; Evans, 2001; Ciardelli, Chiono, 2006].
Различают два вида спраутинга — коллатеральный и терминальный (регенераторный).
...
1.3 Электрическая активность скелетных мышц
1.3.1 Моторный ответ (М-ответ)
Моторный ответ (М-ответ) - суммарный электрический потенциал мышцы в ответ на одиночное электрическое раздражение двигательного или смешанного нерва. Супрамаксимальная стимуляция нерва, позволяющая регистрировать электрический ответ всех двигательных единиц мышцы, является стандартизованной в регистрации и оценке М-ответа, а также в методике оценки скорости проведения по двигательным волокнам. М-ответ при субмаксимальной стимуляции нерва имеет меньшую амплитуду и
длительность, другую форму, отличную от моторного ответа при супрамаксимальной стимуляции. Анализируемыми параметрами М-ответа являются: латентность, амплитуда, длительность, площадь и форма. Необходимо регистрировать порог раздражения (порог М-ответа) — минимальное электрическое раздражение, способное вызвать М-ответ. Грубое повышение порога М-ответа наблюдается при поражении нерва или мышцы, снижение порога встречается крайне редко.
...
1.4 Роль стромальных клеток в восстановлении нерва
Одним из перспективных подходов к лечению повреждений периферической нервной системы является терапевтический нейрогенез, основанный на введении в денервированные ткани генетических конструкций с генами нейротрофических факторов или стволовых/прогениторных клеток. Стромальные стволовые клетки, выделенные из костного мозга или жировой ткани, считаются перспективным инструментом для стимуляции регенерации поврежденной ткани благодаря своей способности стимулировать рост кровеносных сосудов и нервных волокон. Способность стромальных стволовых клеток стимулировать ангиогенез связывают с их способностью секретировать ангиогенные факторы роста и стабилизировать формирующиеся сосуды. На моделях ишемии конечностей и миокарда у животных показано, что локальное и системное введение. Стромальные стволовые клетки способствует увеличению количества сосудов в тканях с нарушенным кровоснабжением и улучшению перфузии тканей кровью [Парфеновассоавт.
...
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Эксперимент был выполнен на 20 белых беспородных крысах весом 150-200 грамм. Животные содержались в стандартных условиях со свободным доступом к корму и воде. Опытных животных делили на 2 группы, в каждой из которых было по 10 крыс: В первой (I) группе животным перерезали нерв и формировали собственную аутонервную вставку 1 см. Во второй (II) группе так же была сформирована собственная аутонервная вставка 1 см., но с подсадкой стромальных клеток жировой ткани. Оперативные вмешательства производили микрохирурги центра травматологии ГУЗ РКБ МЗ РТ под уретановым наркозом (600 мг/кг внутрибрюшинно).
Методом стимуляционнойэлектронейромиографии (ЭНМГ) на сроках 3, 7, 14, 21, 28, 35, 42 суток после операции производилась изучение компенсаторной реорганизации двигательной функции нейро - моторного аппарата икроножных мышц крыс. Раздражающие игольчатые электроды вкалывали параллельно бедренной кости на 1-2 см выше коленного сустава в область проекции седалищного нерва.
...
3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Начиная с 3-их суток после операции производилась оценка динамики восстановления двигательной функции икроножной мышцы крысы, иннервируемой седалищным нервом.
3.1 Моторный (М-) ответ.
3.1.1 Порог возникновения.
Числовые значения порога М-ответа на 3 сутки после повреждения составили: 313.1±70 % (р<0.05) у I группы животных; 294±78 % (р<0.05) у II группы по отношению к контролю. В дальнейшем порог М-ответа у I группы уменьшился, у II группы немного повысился и составил на 7 сутки - 373.8±38.4 % (р<0.05) и 308±96 % (р<0.05); на 14 сутки значения порога уменьшались у обеих групп и составили 213.1±49.7 и 112±27 % (р<0.05) (у I и II групп животных соответственно); на 21 сутки - 118±60 % (р<0.05) у I группы и 94±51.5 % (р<0.05) у II группы животных; на 28 сутки – 152,5±39 % (р<0.05) у I группы и 91±18 % (p>0.05) у II группы; на 35 сутки - 136±27 % (р<0.05) у I группы и 86±11 (р<0.05)% у животных II группы.
...
3.3 Отношение максимальных амплитуд рефлекторного и моторного ответов икроножной мышцы крысы при подсадке стромальных клеток.
Отношение максимальных амплитуд увеличивается на протяжении эксперимента увеличивается. На 14 сутки после травмы значение составляет 56±6 % (р>0.05) по отношению к контролю. На 21 сутки значение равно 47.1±12 % (р>0.05); на 28 - 89±13 % (р>0.05); на 35 – 63.2±18 % (р>0.05); на
42 – 38.9±7 % (р>0.05) по отношению к контролю (рисунок 9).
Рисунок 9 – Отношение максимальных амплитуд
Нmax/Mmaxикроножной мышцы крысы при перерезке седалищного нерва.
По оси абсцисс обозначены сутки после операции, по оси ординат черные столбцы –значения Hmax/Mmax, выраженные в процентах; серые –
контрольные значения, * – достоверность, (р < 0.05).
Как было показано в работах ранее, растущее отношение Нmax/Mmax свидетельствует о повышении рефлекторной возбудимости альфа- мотонейронов спинного мозга и так же может быть связано с ослаблением пресинаптического торможения.
...
Список литературы
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1) Акимов, Г.А. Современные представления о патогенезе, диагностике и лечении травматических поражений нервных стволов конечностей [Текст] / Г.А. Акимов, М.М. Одинак, С.А. Живолупов, С.Б. Силявин, Ю.Т. Шапков // Журн. невропат. и псих. им. С. С.Корсакова. - 1989.
- Т.89. - С.126-132.
2) Бабский,Е.Б. Физиология человека [Текст] / Е.Б. Бабский, В.Д. Глебовский, А.В. Коган и др. – М. : Медицина, 1985. – 544с. – ISBN 5-225- 04175-2.
3) Богданов, Э.И. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации [Текст] / Э.И. Богданов, Р.Р. Фасхутдинов // Журн. невропатол. и психиатр. - 1991.- Т. 91.- № 2.- С. 129-203.
4) Валиуллин, В.В. Нейротрофический контроль синтеза миозинов медленной мышцы морской свинки [Текст] / В.В. Валиуллин, Р.Р. Исламов // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1991.- Т.111.- № 2.- С. 201-203.
5) Волков, Е.М. Исследования нейротрофического контроля ионной проводимости мембраны фазных мышечных волокон лягушки [Текст] / Е.М. Волков, Г.А. Наследов, Г.И. Полетаев // Цитология.- 1981.- Т. 23.- № 7.- С. 803-810.
6) Волков, Е.М. Влияние pH на мембранный потенциал покоя мышечных волокон у лягушки [Текст] / Е.М. Волков // Физиол. ж. СССР.- 1983.- Т. 69.- № 9.- С. 1170-1175.
7) Волков, Е.М. Первичные постденервационные изменения электрогенных свойств мышечной мембраны у млекопитающих [Текст] / Е.М. Волков, Г.И. Полетаев, Х.С. Хамитов [и др.] // Успехи совр.биол.- 1987.- Т.104.- № 6.- С. 412-425.
8) Волков, Е.М. Молекулярные механизмы нейрональной регуляции ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1989б.- Т. 108.- № 4.- С. 80-94.
9) Волков, Е.М. Нейротрофический контроль Na – проницаемости мембраны мышечного волокна [Текст] / Е.М. Волков // Успехи соврем. биол.- 1990.- Т. 109.- № 3.- С. 339-351.
10) Григорович, К.А. Хирургическое лечение повреждений нервов [Текст] / К.А. Григорович. – Л. : Медицина, 1981. – 304с.
11) Жук, О.Н. Влияние фактора роста нервов на регенерацию волокон в седалищном нерве крыс [Текст] / О.Н. Жук, В.Н. Калюнов // Морфология. - 1996. - Т.110. - С.113-115.
12) Карагяур, М.Н. Влияние мезенхимальных стволовых клеток на восстановление периферического нерва после травмы [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / М.Н. Карагяур ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2013. – 24с.
13) Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2009. – 25 с.
14) Лопатина, Т.В. Стимуляция роста нервных волокон стромальными клетками жировой ткани и дифференцировка этих клеток в нейральном направлении [Текст] : автореф. дис. на соис. уч. степ. канд. биол. наук / Т.В. Лопатина ; МГУ им. М.В. Ломоносова. – Москва, 2011. – 25 с.
15) Парфенова, Е.В. Поиск новых «инструментов» для терапевтического ангиогенеза [Текст] / Е.В. Парфенова, З.И. Цоколаева, Д.О. Трактуев и др // Молекулярная медицина. - 2006. - Т.2. - С.10-23.
16) Резвяков, Н.П. Гистохимическая характеристика белых и красных мышц в норме и при денервации [Текст] / Н.П. Резвяков // Архив анат., гистол. и эмбриол.- 1974.- Т. 66.- № 6.- С. 89-91.
17) Резвяков, Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц [Текст]: автореф. дис. ... д-ра мед.наук / Н.П. Резвяков. - Казань, 1982.- 23 с.
18) Трофимова, А.А. Использование аутонервной вставки для восстановления функций поврежденного седалищного нерва крысы [Текст] / А.А. Трофимова, А.М. Еремеев, Р.Ф. Масгутов, А.А. Богов // XXI Съезд физиологического общества им И.П.Павлова, Калуга, 2010 г. – C. 18.
19) Улумбеков, Э.Г. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон [Текст] / Э.Г. Улумбеков, Н.П. Резвяков; В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации мышц. - Л.: Наука, 1980.
- С. 84-104.
20) Altman, J. Post-natal origin of microneurones in the rat brain [Text] /
J. Altman, G.D. Das // Nature. - 1965. - P.953-6.
21) Ambron, R. Priming events and retrograde injury signals. A new perspective on the cellular and molecular biology of nerve regeneration [Text] / R. Ambron, E. Walters // Mol. Neurobiol.- 1996.- V. 13.- № 1.- P. 61-79.
22) Bayol, S. Phenotypic Expression of IGF Binding Protein Transcripts in Muscle, in Vitro and in Vivo [Text] / S. Bayol, P.T. Loughna, C. Brownson // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 2000.- V. 273.- № 1.- P. 282-286.
23) Bishop, D.L. The site effect on the mixed fibres in self-reinnervating flat muscles of a mouse [Text] / D.L. Bishop, R.L. Milton // Exp-Neurol.- 1997.- V. 147.- № 1.- P. 151-158.
24) Bowe, C.B. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text] / C.B. Bowe, Y.D. Kocsis// Dev. BraianPes. - 1987. - V.34. - P.123-131.
25) Bray, J.J. The membrane potential of rat diaphragm muscle fibers and the effect of denervation [Text] / J.J. Bray, M.J. Howken, J.J. Hubbard et al. // J. Physiol. - 1972. - V.255. -P.651-667.
26) Cancalon, P. The relationship of slow Axonal flow to nerve elongation and degeneration [Text]/ P. Cancalon// Advances in Neurochemistry. - 1984 - V.22. - Р.211-241.
27) Carbonetto, S. Nerve fiber growth in culture on tissue substrate from central and peripheral nervous systems [Text] / S. Carbonetto, D. Evans, P. Cochard // J. Neurosci.- 1987.- V. 7.- № 2.- P. 610-620.
28) Cheng, X. Physiological properties of regenerated rat sciatic nerve following lesions [Text]/ X. Cheng // Dev. Braian. Pes.-1989.- V.34. - P.123-131.
29) Ciardelli, G.Materials for peripheral nerve regeneration [Text]/ G. Ciardelli,V. Chiono // Macromol. Biosci. - 2006. - №6. -P.13-26.
30) Cortright, R.N. Regulation of skeletal muscle UCP-2 and UCP-3 gene expression by exercise and denervation [Text] / R.N. Cortright, D. Zheng, J.P. Jones et al. // Am. J. Physiol.- 1999.- V. 276.- № 1.- P. 217-221.
31) De Angelis, C. Acetyl-L-carnitine prevents agedependent structural alterations in rat peripheral nerves and promotes regeneration following sciatic nerve injury in young and senescent rats [Text] / C. De Angelis, C. Scarfo, M. Falcinelli et al. // Exp. Neurol.- 1994.- V. 128.- P. 103-114.
32) De Vries, G.H. Schwann cell proliferation [Text]/ G.H. De Vries// Peripheral neuropathy. - Philadelphia: Saunders. 1993. - Р.290-8.
33) Evans, G.R. Peripheral nerve injury: a review and approach to tissue engineered constructs [Text]/ G.R. Evans // Anat. Rec. - 2001. - № 263.- P.396- 404.
34) Evans, G.R. Approaches to tissue engineered peripheral nerve [Text]
/ G.R. Evans // Clin Plastic. Surg. - 2003. - № 30. - P.559-63.
35) Fink, D.J. Retrograde axonal transport in rat sciatic nerve after nerve crush injury [Text] / D.J. Fink, D. Purkiss, M. Mata // Brain Res. Bull.- 1987.- V. 19.- № 1.- P. 29-34.
36) Finol, H.J. The effects of denervation on contractile properties or rat skeletal muscle [Text] / H.J. Finol, D.M. Lewis, R. Owens // J. Physiol.- 1981.- V. 319.- P. 81-92.
37) Gong, L. The effects of claudin 14 during early Wallerian degeneration after sciatic nerve injury [Text] / L. Gong, Y. Zhu, X. Xu, H. Li, W. Guo, Q. Zhao, D Yao // Neural regeneration research. – 2014. – P. 2151-8
38) Gutmann, E.Neurotrophic relation [Text] / E. Gutmann // Ann. Rev. Physiol.- 1976.- P. 177-216.
39) Gimble, J.M. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine [Text] / J.M. Gimble, A.J. Katz, B.A. Bunnell // Circ Res. - 2007. - V.100. - P.1249-60.
40) Hoffman, P.N. Changes in neurofilament transport coincide temporally with alterations in the caliber of axons in regenerating motor fibers [Text]/ P.N. Hoffman, G.W. Thompson, J. Grifin et al. // J. Cell Biol.- 1985. - V. 101.- P.1332- 1340.
41) Holubar, Y. The degeneration of peripheral fibers [Text] / Y. Holubar. - J.Newral., Newrosury and Psychiatry.- 1950.- V. 13.- № 2.- P. 89-105.
42) Hugh, G.Immunocytochemical analysis of myosin isoenzymes in denervated rat fast and slow muscles [Text] / G. Hugh, J.F.Y. Hoh // Proc. Austral. Physiol. and Pharmacol. Soc.- 1987.- V.18.- № 1.- P. 45.
43) Jakubiec-Puka, A. Contents of myosin heavy chains in denervated slow and fast rat leg muscles [Text] / A. Jakubiec-Puka, I. Ciechomska, J. Morga et al. // Comp. Biochem. Physiol. Biochem. Mol. Biol. - 1999.- V. 122.- № 3.- P. 355- 362.
44) Jewett, G.H. Motor activity patterns in rat soleus muscle after neonatal partial denervation [Text]/ G.H. Jewett, K.J. Walden // Neuromusc. Disor.
- 1985. - V.5. - P.179-186.
45) Kean, C.J. Dynamic properties of denervated fast and slow twitch muscle of the cat [Text] / C.J. Kean, D.M. Lewis, J.D. McGarrick // J. Physiol.- 1974.- V. 237.- № 1.- P. 103-113.
46) Kocsis, J.D. Schwann cells and their precursors for repair of central nervous system myelin [Text] / J.D. Kocsis, S.G. Waxman // Brain. - 2007. - V. 130. - P.1978-80.37-49.
47) Lewis, D.M. The effect of denervation on the mechanical and electrical responses of fast and slow mammalian twitch muscle [Text] / D.M. Lewis // J. Physiol.- 1972.- V. 222.- № 1.- P. 51-75.
48) Masayki,В. Electrophysiological study of regeneration from constricted ervefibres[Text]/ B. Masayki, K. Hideaki// Electromyogr. abdclin. Newrophisiol. - 1986. - V.26. - P.3-11.
49) Matysiak, G.R. Activity and motor units size in partially denervated rat medial gastrocnemius [Text] / G.R. Matysiak // J. Appl. Physiol.- 1986.- V. 76.- P. 2663-2671.
50) Meller, K. Early structural changes in the axoplasmic cytoskeleton after axotomy studied by cryofixation [Text] / K. Meller // Cell Tiss. Res.- 1987.- V. 250.- № 3.- P. 663-672.
51) Millesi, H. Peripheral nerve surgery today: turning point or continuous development? [Text]/ H. Millesi// J Hand Surg [Br]. - 1990. - №15. - P.28.
52) Moonen, G.Neurotrophic factors: past and future [Text] / G. Moonen,
B. Malgrange, J.M. Rigo et al. // Acta Neurol. Belg.- 1996.- V. 96.- № 3.- P. 203- 218.
53) Movaghar, B. Induced bone marrow stromal cells into Schwann cells by progesterone improved the outcome of transected sciatic nerve model [Text] /
B. Movaghar, T. Tiraihi, M. Javan et al. // J Neurosurg Sci. – 2015.
54) Murakami, T.Transplanted neuronal progenitor cells in a peripheral nerve gap promote nerve repair [Text]/ T. Murakami, Y. Fujimoto, Y. Yasunaga,
O. Ishida,N. Tanaka, Y. Ikuta, M. Ochi// Brain Res. - 2003. -P.17-24.
55) Myckatyn, T. Stem cell transplantation and other novel techniques for promoting recovery from spinal cord injury [Text] / T. Myckatyn, S.E. MacKinnon, J.W. McDonald // Transpl. Immunol. - 2004. - № 12. - P.343-58.
56) Nakagami, H. Adipose tissue-derived stromal cells as a novel option for regenerative cell therapy [Text] / H. Nakagami, R. Morishita, K. Maeda et al. // J AtherosclerThromb. - 2006. - V.13. - P.77-8.
57) Otto, D. Pharmacological effects of nerve growth factor and fibroblast growth factor applied to the transectioned sciatic nerve on neuron death in adult
dorsal root ganglia [Text]/ D. Otto, K.Unsicker,C. Grothe// Neurosci. Lett. - 1987.
- № 83. - P.156-60.
58) Raimondo, S. Schwann cell behavior after nerve repair by means of tissue-engineered muscle-vein combined guides [Text] / S. Raimondo, S. Nicolino,
P. Tos, B. Battiston, M.G. Giacobini- Robecchi, I. Perroteau, S. Geuna // J. Comp. Neurol. - 2005. - № 489. -P.249-59.
59) Rath, E.M. Impaired peripheral nerve regeneration in a mutant strain of mice with a Schwann cell defect [Text]/ E.M. Rath, D. Kelly, T.W. Bouldin, B. Popko // J.Neurosci. - 1995. - №15. -P.7228-37.
60) Rehman, J. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells [Text] / J. Rehman, D. Traktuev, J. Li et al // Circulation. - 2004. - V.109. - P.1292-8.
61) Reynolds, B.A. Weiss, Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system [Text] / B.A. Reynolds, S. Weiss // Science. - 1992. - P.1707-10.
62) Rubina, K. Adipose Stromal Cells Stimulate Angiogenesis via Promoting Progenitor Cell Differentiation, Secretion of Angiogenic Factors, and Enhancing Vessel Maturation [Text] / K. Rubina, N. Kalinina, A. Efimenko, T. Lopatina, V. Melikhova, Z. Tsokolaeva, V. Sysoeva, V. Tkachuk, Y. Parfyonova // Tissue Eng Part A. - 2009. - V.15. - P.2039-50.
63) Schlaepfer, W.W. Calcium-activated pro-tease and the regulation of the axonal cytoskeleton [Text]/ W.W. Schlaepfer, U. Zimmerman // Advances in Neurochemistry. – 1984. - V.22. - Р.261-273.
64) Sjoberg, J. Insulin-like growth factor (IGF-I) as a stimulator of regeneration in the freeze-injured rat sciatic nerve [Text]/ J. Sjoberg, M.Kanje // Brain Res. - 1989. - № 485. -P.102-8.
65) Sobol, J.B. Effects of delaying FK506 administration on neuroregeneration in a rodent model [Text] / J.B. Sobol, J.B. III Lowe, R.K. Yang,
S.K. Sen, D.A. Hunter, . E. Mackinnon// J. Reconstr. Microsurg. - 2003. - №19. - P.113-8.
66) Syrovy, I. Effect of exercise on skeletal muscle myosin ATP-ase activity [Text] / I. Syrovy, E. Gutmann, J. Melichna // Physiol. Bohemoslov.- 1972.- V. 21.- № 6.- P. 633-638.
67) Terenghi, G. Peripheral nerve injury and regeneration [Text]/ G. Terenghi// Histol.Histopathol. - 1995. - №10. -P.709-18.
68) Tohill, M.Stem cell plasticity and therapy for injuries of the peripheral nervous system [Text]/ M. Tohill,G. Terenghi // Biotechnol. Appl. Biochem. - 2004. - №40. -P.17-24.
69) Tower, S.S. Atrophy and denervation in skeletal muscle [Text] / S.S. Tower // Amer. J. Anat.- 1935.- V. 56.- P. 1- 44.
70) Tower, S.S. The reaction of muscle to denervation [Text] / S.S. Tower
// Physiol. Rev.- 1939.- V. 19.- P. 1- 48.
71) Waller, A.Eхperiments on the section of the glossopharyngeal and hypoglossal nerves of the frog and observations produced the reby in the structure of their primitive fibres [Text] / A. Waller // Philosoph. Trans. London.- 1850.- V. 140.- P. 423-429.
72) Williams, L.R.Modification of fibrin matrix formation in situenhances nerve regeneration in silicone chambers [Text]/ L.R. Williams, S.Varon // J. Comp. Neurol. - 1985. - №231. -P.209-20.
73) Zhang, D.Z. Transplantation of autologous adipose-derived stem cells ameliorates cardiac function in rabbits with myocardial infarction [Text] / D.Z. Zhang, L. Gai, H.W. Liu et al // Chin. Med. J. - 2007. - V.120. - P.300-7
74) Zhou, L.N. Co-Graft of Bone Marrow Stromal Cells and Schwann Cells Into Acellular Nerve Scaffold for Sciatic Nerve Regeneration in Rats [Text] /
L.N. Zhou, J.W. Zhang, X.L. Liu et al. // J Oral Maxillofac Surg. – 2015. – P.00197-4
Пожалуйста, внимательно изучайте содержание и фрагменты работы. Деньги за приобретённые готовые работы по причине несоответствия данной работы вашим требованиям или её уникальности не возвращаются.
* Категория работы носит оценочный характер в соответствии с качественными и количественными параметрами предоставляемого материала. Данный материал ни целиком, ни любая из его частей не является готовым научным трудом, выпускной квалификационной работой, научным докладом или иной работой, предусмотренной государственной системой научной аттестации или необходимой для прохождения промежуточной или итоговой аттестации. Данный материал представляет собой субъективный результат обработки, структурирования и форматирования собранной его автором информации и предназначен, прежде всего, для использования в качестве источника для самостоятельной подготовки работы указанной тематики.
bmt: 0.00545