Вход

Определение хлорамфеникола в молоке методом иммунохроматографического анализа

Рекомендуемая категория для самостоятельной подготовки:
Курсовая работа*
Код 590100
Дата создания 2020
Страниц 37
Мы сможем обработать ваш заказ (!) 19 декабря в 16:00 [мск]
Файлы будут доступны для скачивания только после обработки заказа.
1 330руб.
КУПИТЬ

Содержание

Оглавление
1 Введение 2
2 Обзор литературы 4
2.1 Иммунохроматографический анализ 4
2.1.1 Общие принципы ИХА 4
2.1.2 Основные компоненты тест-систем 7
2.1.3 Метки в иммунохроматографическом анализе 9
2.2 Хлорамфеникол. 15
2.3 Существующие методы определения хлорамфеникола. 16
3 Экспериментальная часть 19
3.1 Химические реагенты и биологические препараты 19
3.2 Оборудование 19
3.3 Приготовление растворов 20
3.4 Методы исследований 20
3.4.1 Получение конъюгатов сукцината ХАФ с БСА (ХАФ-БСА) 20
3.4.2 Получение наночастиц золота 21
3.4.3 Получение конъюгата наночастиц золота с антителами 21
3.4.4 Изготовление иммунохроматографической тест-полоски 21
3.4.5 Проведение иммунохроматографического анализа 22
3.5 Определение аналитических характеристик 22
4 Результаты и их обсуждение 23
4.1 Получение иммунореагентов 23
4.2 Разработка иммунохроматографической тест-системы для определения ХАФ 25
4.3 Определение хлорамфеникола в молоке. 29
5 Выводы 32
6 Список литературы 33

Фрагмент работы для ознакомления

Введение ПАВ может оказывать влияние на следующие процессы:
• Капиллярная скорость протекания раствора вдоль мембраны.
Чтобы придать смачиваемость мембране, в ее поры вводят определенное количество ПАВ. Чаще всего это количество обеспечивает максимальную скорость потока жидкости вдоль мембраны.
• Адсорбция белков.
Введение различного рода ПАВ может оказать сильное влияние на сорбционные свойства мембраны. Избыток вводимых веществ может приводить к уменьшению количества белка, которое способна сорбировать на себе мембрана.
• Эффективность прохождения реагентов вдоль мембраны.
Эффективность прохождения реагентов вдоль мембраны напрямую обусловлена смачиваемостью мембраны. Количество ПАВ следует выбирать так, чтобы оптимизировать параметры сорбции реагентов по мембране и ширину окрашенной полосы, которая будет сохраняться на протяжении всего анализа.
• Ширина полосы.
...

2.1.1 Общие принципы ИХА
Иммунохроматографический метод анализа (ИХА) основан на принципах тонкослойной хроматографии и включает в себя реакцию между антигеном и соответствующим ему антителом с образованием специфических иммунокомплексов, которые можно регистрировать визуально при помощи меток [2]. В качестве меток используют окрашенные латексы, квантовые точки, магнитные частицы и другие. Но наиболее широкое распространение в методах ИХА получили наночастицы золота (НЧЗ) благодаря легкости получения частиц заданного размера и высокой чувствительности визуальной детекции [4].
ИХА проводится при помощи специальных мембранных полосок, которые включают в себя все необходимые реагенты, т.е. для проведения анализа достаточно лишь добавить анализируемый образец. Тест-полоска состоит из четырех частей (рис. 1), размещенных на опорной пластинке (как правило, пластиковой) [1].
1.
...

2.1.2 Основные компоненты тест-систем
Аналитическая мембрана.
Аналитическая мембрана тонкая и хрупкая, поэтому она крепится на пластиковый или нейлоновый опорный слой, чтобы ее можно было резать и брать руками. Чаще всего ее делают из нитроцеллюлозы, хотя используют и другие доступные материалы, например нейлон, полиэфирсульфон, полиэтилен.
Размер пор мембран на основе нитроцеллюлозы составляет от 0,05 до 15 мкм. Однако не только размер пор мембраны и материал, из которого она сделана, но и скорость переноса анализируемого образца вдоль полоски играет роль, поскольку она влияет на оптимальное время анализа [2].
На аналитической мембране располагаются иммобилизованные компоненты – специфические иммунореагенты. Обычно их наносят на специальном приборе в виде узких линий, находящихся недалеко друг от друга. Материал мембраны влияет на ее сорбционные свойства.
...

2.1.3 Метки в иммунохроматографическом анализе
Метка играет огромную роль в быстрых иммунохроматографических анализах, поскольку с ее помощью можно оценить результат визуально, не прибегая к дополнительным процедурам или использованию специального оборудования.
Идеальная метка для анализа должна [5]:
• регистрироваться несколькими методами или технологиями в очень большом диапазоне;
• просто и эффективно связываться с биологическими веществами в конъюгаты без потери химической и биологической активности;
• обладать низким или вообще не обладать неспецифическим взаимодействием, то есть отношение сигнал/шум в многокомпонентных системах должно быть наибольшим;
• быть устойчивой в данных химических условиях анализа и при данной температуре;
• быть коммерчески доступной, иметь низкую стоимость;
• легко переносится потоком жидкости;
• быть способной к использованию для обнаружения нескольких аналитов.
...

2.2 Хлорамфеникол.
Хлорамфеникол (ХАФ) или левомицетин является антибиотиком широкого спектра действия. Название по ИЮПАК: D-(-) – трео-1-(n-нитрофенил)-2дихлор-ацетиламино-1,3-пропандиол (рис. 4). Он активен к грамположительным и грамотрицательным бактериям, а также к штаммам, устойчивым к пенициллину, стрептомицину, сульфаниламидам. Устойчивость микроорганизмов к хлорамфениколу вырабатывается медленно [3]. ХАФ был одним из первых антибиотиков, которые стали получать синтетически в промышленных масштабах.
ХАФ используют для лечения таких заболеваний, как менингит, холера, чума, брюшной тиф, конъюнктивит . В настоящее время он сравнительно мало используется в медицине, поскольку имеет множество побочных эффектов, таких как апластическая анемия, лейкемия, угнетение головного мозга. Также у людей, принимающих данный антибиотик, были описаны головная боль, легкая депрессия, спутанность сознания и делирий. Ввиду этого ХАФ используется только в случаях, когда нет альтернативы.
...

2.3 Существующие методы определения хлорамфеникола.
На сегодняшний день существует множество методов определения хлорамфеникола в пищевых продуктах как физико-химических, так и иммунохимических.
Хроматографические методы для определения ХАФ применяют уже сравнительно давно. Предложено большое число вариантов таких методов с применением различных видов хроматографии, условий ее проведения и способов детектирования. Одним из часто встречающихся методов является газовая хроматография в сочетании с электронно-захватным детектором [30] или с масс-спектрометром [31].
Еще один широко применяемый метод – высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) [32]. Она позволяет измерять концентрацию ХАФ в молоке с разной степенью точности.
...

3.1 Химические реагенты и биологические препараты
В работе использовали следующие реагенты: золотохлористоводородную кислоту (ЗХВК), Твин 20 («Fluka», Швейцария); хлорамфеникол, сукцинат хлорамфеникола, 1-этил-3-(3-диметиламинопропил)-карбодиимид хлорид , N–гидроксисукцинимид, бычий сывороточный альбумин (БСА), цитрат натрия («Sigma», США); диметилформамид (ДМФА), карбонат, азид, хлорид натрия; одно- и двузамещенные фосфаты калия, сахарозу («Химмед», Россия), поликлональные антитела к ХАФ, белок А стафилококка (ЗАО «НВО Иммунотех», Россия).
В мультимембранных тест-полосках для иммунохроматографии использовали следующие мембраны:
• аналитические нитроцеллюлозные мембраны – CNPC (размер пор 15 µ) (MDI, Индия);
• мембраны для нанесения конъюгата – РТ-5 (MDI, Индия));
• мембраны для нанесения образца – GFB-R7L, GFB-R4, (MDI, Индия), MAPDS-0300 (Arista Biologicals, США);
• абсорбирующая мембрана – АР045 (MDI, Индия).
Образцы молока были взяты из торговой сети.
...

3.2 Оборудование
Измерение рН проводили на рН-метре фирмы «Mettler-Toledo» (Швейцария) с точностью до 0,02 ед. рН, измерение рН растворов коллоидного золота проводили с использованием рН-полосок фирмы Fisher (США) с диапазоном определения рН от 5 до 9 единиц.
Навески реагентов взвешивали на электронных весах «Mettler-Toledo» (Швейцария) с точностью до 0,1 мг.
Измерения оптического поглощения проводили на спектрофотометре Shimadzu UV-1202 («Shimadzu», Япония).
Нанесение конъюгатов ХАФ с БСА на мембрану производили при помощи автоматического диспенсера бесконтактного типа BioDot XYZ 3050 (BioJet Quanti 3000, BioDot, США).
Для резки тест-полосок использовали резак гильотинового типа Index Cutter-I, (A-Point Technologies, США).
Центрифугирование производили, используя Eppendorf 5810R (Eppendorf, Германия).
...

3.4.3 Получение конъюгата наночастиц золота с антителами
К 1 мл раствора коллоидного золота с pH 7,0-7,5 (10 мкл/мл 0,1 М раствора Na2CO3) добавляли по каплям 100 мкл раствора антител (0,22 мг/мл в деионизованной воде), перемешивали 30 минут при комнатной температуре. После чего добавляли 20% раствор БСА до конечной концентрации 0,2%, выдерживали 20 минут при комнатной температуре, затем вводили 50% раствор сахарозы (до 10%) и азид натрия (до 0,01%) и хранили при температуре +4˚С.
Для удаления несвязавшихся антител конъюгат центрифугировали (30 мин, 11000g, 4˚С). Супернатант удаляли, осадок перерастворяли в требуемом объеме ФБ, содержащего 0,1% БСА, 10% сахарозы и 0,01% азида натрия. Полученный раствор наносили на полоску стекловолоконной мембраны 4×4 мм из расчета 5 мкл на полоску.
3.4.
...

3.4.4 Изготовление иммунохроматографической тест-полоски
На аналитическую нитроцеллюлозную мембрану CNPC(15µ) наносили раствор конъюгата ХАФ-БСА в выбранной концентрации в ФБС с помощью программируемого автоматического диспенсера BioDot XYZ 3050 (BioJet Quanti 3000, BioDot, США) для формирования аналитической зоны. Для формирования контрольной зоны иммунохроматографической системы на расстоянии 5 мм от аналитической наносили раствор белка А с концентрацией 1 мг/мл в ФБС. Использовали следующие параметры насоса BioJet Quanti 3000 для нанесения образцов: размер капли – 30 нл, шаг – 0,3 мм, скорость – 50 мм/сек. Полоски высушивали при температуре 37˚С (относительная влажность 25-30%) в течение 24 ч и хранили при комнатной температуре в герметично закрытой упаковке.
Растворы конъюгатов антител с наночастицами коллоидного золота наносили на мембраны РТ-5 и высушивали на воздухе при комнатной температуре. Собирали тест-полоски в соответствии со схемой на рис. 1.
3.4.
...

3.5 Определение аналитических характеристик
При выявлении промахов использовали тест Граббса и Q-критерий.
Предел обнаружения определяли как концентрацию, соответствующую значению интенсивности сигнала градуировочной кривой
За предел определения принимали концентрацию, соответствующую значению интенсивности сигнала градуировочной кривой , где , – значение интенсивности сигнала каждого измерения пробы при отсутствии аналита, – среднее значение интенсивности сигнала пробы при отсутствии аналита, n – количество измерений (n=10).
Предел обнаружения при визуальной регистрации определяли как минимальную концентрацию антибиотика, при которой не наблюдается окрашенной линии в тестовой зоне.
Воспроизводимость анализа. Проводили по пять повторных измерений стандартных растворов ХАФ. Рассчитывали стандартное отклонение и относительное стандартное отклонение для каждого раствора по формуле:
.
...

4 Результаты и их обсуждение
При разработке тест-системы для определения хлорамфеникола использовали непрямую схему конкурентного иммунохроматографического анализа с конъюгатом ХАФ-БСА и мечеными наночастицами золота поликлональными антителами против ХАФ (рис. 3). В присутствии определяемого антигена (ХАФ) в образце по мере продвижения вдоль полоски происходит образование комплекса антигена с мечеными наночастицами золота специфическими антителами (Ат-НЧЗ), сорбированными на стекловолоконной мембране. Далее образовавшийся иммунокомплекс под действием капиллярных сил движется в направлении тестовой зоны с иммобилизованным конъюгатом ХАФ-БСА. В случае образования комплекса между специфическими антителами, мечеными НЧЗ, с иммобилизованным в составе конъюгата ХАФ-БСА хлорамфениколом наблюдается появление окрашенной полосы, интенсивность которой уменьшается при увеличении концентрации ХАФ в образце.
...

4.1 Получение иммунореагентов
Первоочередная задача в ходе разработки метода ИХА для определения ХАФ состояла в получении иммунохимических реагентов. Для иммобилизации в тестовой зоне синтезировали конъюгаты сукцината ХАФ с БСА (в соотношении 20:1 и 5:1) по методу активированных эфиров (с использованием водорастворимого карбодиимида и N-гидроксисукцинимида). Метод включает в себя активацию карбоксильной группы сукцината ХАФ путем образования N-гидроксисукцинимидного эфира и взаимодействия последнего с аминогруппой лизина белка с образованием пептидной связи (рис. 5).

Рис. 5. Схема синтеза конъюгата ХАФ-БСА
Выбор данного метода синтеза конъюгатов обусловлен тем, что, по сравнению с использованием одного карбодиимида, он дает меньше побочных продуктов и обеспечивает более высокий выход продукта за счет формирования лучшей уходящей группы и более стабильного промежуточного продукта. Для иммобилизации использовали концентрацию полученных конъюгатов 0,5 мг/мл в ФБС.
...

4.2 Разработка иммунохроматографической тест-системы для определения ХАФ
Разработка тест-системы происходила в несколько этапов. На первом из них изучали влияние количества сорбированных специфичных к ХАФ антител на поверхности наночастиц золота и состава конъюгата ХАФ-БСА на аналитические характеристики метода.
Для этого сравнивали интенсивности сигналов при концентрациях хлорамфеникола 0 и 1 нг/мл в ФБСТ. Концентрации иммунореагентов были одинаковы. Результаты приведены на рис. 7.

Рис. 7. Зависимость интенсивности сигнала от состава иммунореагентов
Чтобы понять, во сколько раз изменяется интенсивность при повышении концентрации ХАФ от нуля до единицы, считали отношение I1/I0, где I1 – интенсивность сигнала при концентрации ХАФ 1нг/мл, а I0 – интенсивность сигнала при отсутсвии ХАФ в растворе. Результаты представлены в таблице 1.
Таблица 1.
...

4.3 Определение хлорамфеникола в молоке.
Задача настоящей работы заключалась в создании тест-системы для определения остаточных количеств ХАФ в цельном молоке.
Прежде всего необходимо было подобрать условия для свободного протекания анализируемого образца вдоль тест-полоски, поскольку молоко является достаточно сложной биологической жидкостью, и в неразбавленном виде плохо течет по мембране. Для проведения анализа молоко разбавляли в 4 раза ФБСТ (разбавление молока в 2 раза было недостаточным), предел обнаружения разработанного метода позволяет это делать.

Рис. 9. Градуировочные зависимости в молоке (1:3 в ФБСТ) и в буферном растворе
Из градуировочных зависимостей на рис. 9 видно, что кривые, полученные на основе стандартных растворов ХАФ в буферном растворе и на основе стандартов ХАФ в разбавленном молоке (3,2%, Домик в деревне) сильно расходятся.
...

6

Список литературы

. Zhang G., Guo J., Wang X. Immunochromatographic Lateral Flow Strip Tests // Methods Mol. Biol. 2009. V. 504. P. 169—183. (doi:10.1007/978-1-60327-569-9_12)
. Posthuma-Trumpi G., Korf J., van Amerongen A. Lateral flow (immuno)assay: its strengths, weaknesses, opportunities and threats. A literature survey // Anal. Bio-anal.Chem. 2009. V. 393. №2. P. 569—582.
. Егоров Н.С. Основные учения об антибиотиках. М.: Изд-во МГУ; Наука, 2004. С. 528.
. Wilson R. The use of gold nanoparticles in diagnostics and detection // Chem. Soc. Rev. 2008. V. 37. P. 2028—2041.
. Wong R C, Tse H.Y. Lateral Flow Immunoassay. NY USA: Humana Press, 2009. P. 223.
. Морозова В.С., Габрильянц О.А., Мягкова М.А. Диагностика и профилактика заболеваний зависимости. М.: Академия Естествознания, 2015. С. 177.
. https://www.sigmaaldrich.com/content/dam/sigma-aldrich/docs/Sigma-Aldrich/General_Information/1/tb500en00em-rapid-lateral-flow-test-strips.pdf
. Khreich N., Lamourette P., Boutal H., Devilliers K., Creminon C., Volland H. Detection of Staphylococcus enterotoxin B using fluorescent immunoliposomes as label for immunochromatographic testing // Anal. Biochem. 2008. V. 377. №2. P. 182—188.
. Edwards K.A., Baeumner A.J. Optimization of DNA-tagged dye-encapsulating liposomes for lateral-flow assays based on sandwich hybridization // Anal. Bio-anal.Chem. 2006. V. 386. №5. P. 1335—1343.
. Van Amerongen A., Wichers J.H., Berendsen L.B.J.M., Timmermans A.J.M., Keizer G.D., van Doorn A.W.J., Bantjes A. van Gelder W.M.J. Colloidal carbon particles as a new label for rapid immunochemical test methods: Quantitative computer image analysis of results // J. Biotechnol. 1993. V. 30. №2. P.185—195.
. Goryacheva I.Y., Lenain P., De Saeger S. Nanosized labels for rapid immuno-tests // TrAC, Trends Anal. Chem. 2013. V. 46. P 30—43.
. Linares E.M., Kubota L.T., Michaelis J., Thalhammer S. Enhancement of the detection limit for lateral flow immunoassays: Evaluation and comparison of bioconju-gates // J. Immunol. Methods. 2012. V. 375. №1-2. P. 264—270.
. Hagan A.K., Zuchner T. Lanthanide-based time-resolved luminescence immu-noassays // Anal. Bioanal.Chem. 2011. V. 400. №9. P. 2847—2864.
. Sund H., Blomberg K., Meltola N., Takalo H. Design of Novel, Water Soluble and Highly Luminescent Europium Labels with Potential to Enhance Immunoassay Sen-sitivities // Molecules. 2017. V. 22. №10. P. 1807.
. Obonyo O., Fisher E., Edwards M., Douroumis D. Quantum dots synthesis and biological applications as imaging and drug delivery systems // Crit. Rev. Biotechnol. 2010. V. 30. №4. P. 283—301.
. Jahangir M.A., Gilani S.J., Muheem A., Jafar M., Aslam M., Ansari M.T., Abul Barkat M. Quantum Dots: Next Generation of Smart Nano-Systems // Pharm. Nanotech-nol. 2019. V. 7. №3. P. 234—245.
. Taranova N.A., Berlina A.N., Zherde v A.V., Dzantiev B.B. “Traffic light” im-munochromatographic test based on multicolor quantum dots for the simultaneous detection of several antibiotics in milk // Biosens. Bioelectron. 2015. V. 63. P. 255—261.
. Stults N. L., Stocks N.F., Rivera H., Gray J., McCann R.O., O’Kane D., Cum-mings R.D., Cormier M.J., Smith D.F. Use of recombinant biotinylated aequorin in mi-crotiter and membrane-based assays: Purification of recombinant apoaequorin from Escherichia coli // Biochemistry. 1992. V. 31. №5. P. 1433—1442.
. Liotta L.A., Christiansen B.C., Day A.R., Harlacher T., Paweletz K. Light emitting immunoassay. №US patent 5942407. Application 08/882594 from 25.06.1997, publ. 24.08.1999.
. Wang Y., Xu H., Wei M., Gu H., Xu Q., Zhu W. Study of superparamagnetic nanoparticles as labels in the quantitative lateral flow immunoassay // Mater. Sci. Eng., C. 2009. V. 29. №3. P. 714—718.
. Connolly R., O’Kennedy R. Magnetic lateral flow immunoassay test strip de-velopment – Considerations for proof of concept evaluation // Methods (Amsterdam, Neth.). 2017. V. 116. P. 132—140.
. Mohamad Nor N., Abdul Razak K., Tan S.C., Noordin R. Properties of surface functionalized iron oxide nanoparticles (ferrofluid) conjugated antibody for lateral flow immunoassay application // J. Alloys Compd. 2012. V. 538. P. 100—106.
. Madison R., Maklins J.D. Latex nanospheres delivery systems // Brain Res. 1990. V. 7. №3. P. 187—192.
. Ling S., Li X., Zhang D., Wang K., Zhao W., Zhao Q., Wang R., Yuan J., Xin S., Wang S. Detection of okadaic acid (OA) and tetrodotoxin (TTX) simultaneously in seafood samples using colloidal gold immunoassay // Toxicon. 2019. V. 165. P. 103—109.
. ?Дыкман Л.Г., Богатырев В.А. Наночастицы золота: получение, функцио-нализация, использование в биохимии и иммунохимии. // Успехи химии. 2007. Т. 76. №2. С. 199—213.
. Хлебцов Н.Г., Богатырев В.А., Дыкман Л.Г., Хлебцов Б.Н. Плазмонно-резонансные наночастицы для биодиагностики и медицины.// Нанотехника. 2007. №2. С. 77—80.
. Frens G. Controlled Nucleation for the Regulation of the Particle Size in Monodisperse Gold Suspensions // Nature (London), Phys. Sci. 1973. V. 241. №105. P. 20—22.
. https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/TXT/PDF/?uri=CELEX:32003D0181&from=LV (19.05.2020)
. https://sudact.ru/law/reshenie-soveta-evraziiskoi-ekonomicheskoi-komissii-ot-09102013_3/tr-ts-0332013/prilozhenie-n-4/ (19.05.2020)
. Ding S., Shen J., Zhang S., Jiang H., Su Z. Determination of Chloramphenicol Residue in Fish and Shrimp Tissues by Gas Chromatography with a Microcell Electron Capture Detector // J. AOAC Int. 2005. V. 88. №1. P. 57—60.
. Sanchez-Brunete C., Albero B., Miguel E., Tadeo J.L. Rapid Method for De-termination of Chloramphenicol Residues in Honey Using Gas Chromatography-Mass Spectrometry // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2005. V. 75. №3. P. 459—465.
. Guidi L. R., Tette P.A.S., Fernandes C., Silva L.H.M., Gloria M.B.A. Advances on the chromatographic determination of amphenicols in food // Talanta. 2017. V. 162. P. 324—338.
. Xie Y., Hu Q., Zhao M., Cheng Y., Guo Y., Qian H., Yao W. Simultaneous De-termination of Erythromycin, Tetracycline, and Chloramphenicol Residue in Raw Milk by Molecularly Imprinted Polymer Mixed with Solid-Phase Extraction // Food Anal. Methods. 2017. V. 11. №2. P. 374—381.
.Han J., Wang Y., Yu C., Yan Y., Xie X. Extraction and determination of chlo-ramphenicol in feed water, milk, and honey samples using an ionic liquid/sodium citrate aqueous two-phase system coupled with high-performance liquid chromatography // Anal. Bioanal. Chem. 2011. V. 399. №3. P. 1295—1304.
. Tu C., Guo Y., Dai Y., Wei W., Wang W., Wu L., Wang A. Determination of Chloramphenicol in Honey and Milk by HPLC Coupled with Aptamer-Functionalized Fe3O4/Graphene Oxide Magnetic Solid-Phase Extraction // J. Food Sci. 2019. V. 84. №12. P. 3624—3633.
. Wang H., Zhou X.-J., Liu Y.-Q., Yang H.-M., Guo Q.-L. Simultaneous Deter-mination of Chloramphenicol and Aflatoxin M1Residues in Milk by Triple Quadrupole Liquid Chromatography?Tandem Mass Spectrometry // J. Agric. Food Chem. 2011. V. 59. №8. P. 3532—3538.
. Wang L., Zhang Y., Gao X., Duan Z., Wang,S. Determination of Chloramphen-icol Residues in Milk by Enzyme-Linked Immunosorbent Assay: Improvement by Bio-tin?Streptavidin-Amplified System // J. Agric. Food Chem. 2010. V. 58. №6. P. 3265—3270.
. Chughtai M.I., Maqbool U., Iqbal M., Shah M.S., Fodey T. Development of in-house ELISA for detection of chloramphenicol in bovine milk with subsequent confirmatory analysis by LC-MS/MS // J. Environ. Sci. Health, Part B. 2017. V. 52. №12. P. 871—879.
. Scortichini G., Annunziata L., Haouet M.N., Benedetti F., Krusteva I., Galarini R. ELISA qualitative screening of chloramphenicol in muscle, eggs, honey and milk: method validation according to the Commission Decision 2002/657/EC criteria // Anal. Chim. Acta. 2005. V. 535. №1-2. P. 43—48.
. Федорова М.Д., И.П.Андреева И.П., Вылегжанина Е.С., Комаров А.А., Рубцова М.Ю., Самсонова Ж.В., Егоров А.М. Иммуноферментный анализ хлорам-феникола в продуктах питания // Биотехнология. 2009. №6. С. 79—87.
. Zhang S., Zhang Z., Shi W., Eremin S.A., Shen J. Development of a Chemilu-minescent ELISA for Determining Chloramphenicol in Chicken Muscle // J. Agric. Food Chem. 2006. V. 54. №16. P. 5718—5722.
. Byzova N.A., Zvereva E.A., Zherdev,A.V., Eremin S.A., Dzantiev B.B. Rapid pretreatment-free immunochromatographic assay of chloramphenicol in milk // Talanta. 2010. V. 81 №3. P. 843—848.
. Zhou J., Nie W., Chen Y., Yang C., Gong L., Zhang C., Chen Q., He L., Feng, X. Quadruplex gold immunochromatogaraphic assay for four families of antibiotic resi-dues in milk // Food Chem. 2018. V. 256. P. 304—310.
. Hendrickson O.D., Zvereva E.A., Shanin I.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. De-velopment of a multicomponent immunochromatographic test system for the determina-tion of fluoroquinolone and amphenicol antibiotics in dairy products // J. Sci. Food Agric. 2019. V. 99. №8. P. 3834—3842.
. Berlina A.N., Taranova N.A., Zherdev A.V., Vengerov Y.Y., Dzantiev B.B. Quantum dot-based lateral flow immunoassay for detection of chloramphenicol in milk // Anal. Bioanal. Chem. 2013. V. 405. №14. P. 4997—5000.
. Qie Z., Yan W., Gao Z., Meng W., Xiao R., Wang S. An anti-BSA antibody-based immunochromatographic assay for chloramphenicol and aflatoxin M1 by using carboxy-modified CdSe/ZnS core–shell nanoparticles as label // Microchim. Acta. 2020. V. 187. №1.
. Liu S., Bai J., Huo Y., Ning B., Peng Y., Li S., Han D, Kang W, Gao Z. A zir-conium-porphyrin MOF-based ratiometric fluorescent biosensor for rapid and ultrasensitive detection of chloramphenicol // Biosens. Bioelectron. 2019. Pre-proof.
. Javidi M., Housaindokht M.R., Verdian A., Razavizadeh B.M. Detection of chloramphenicol using a novel apta-sensing platform based on aptamer terminal-lock in milk samples // Anal. Chim. Acta. 2018. V. 1039. P. 116—123.
. Govindasamy M., Chen S.-M., Mani V., Devasenathipathy R., Umamaheswari R., Joseph Santhanaraj K., Sathiyan, A. Molybdenum disulfide nanosheets coated multi-walled carbon nanotubes composite for highly sensitive determination of chloramphenicol in food samples milk, honey and powdered milk // J. Colloid Interface Sci. 2017. V. 485. P. 129—136.
. https://www.made-in-china.com/factory/chloramphenicol-rapid-test.html (24.05.2020)
. http://тесты-антибиотики.рф (24.05.2020)
Очень похожие работы
Найти ещё больше
Пожалуйста, внимательно изучайте содержание и фрагменты работы. Деньги за приобретённые готовые работы по причине несоответствия данной работы вашим требованиям или её уникальности не возвращаются.
* Категория работы носит оценочный характер в соответствии с качественными и количественными параметрами предоставляемого материала. Данный материал ни целиком, ни любая из его частей не является готовым научным трудом, выпускной квалификационной работой, научным докладом или иной работой, предусмотренной государственной системой научной аттестации или необходимой для прохождения промежуточной или итоговой аттестации. Данный материал представляет собой субъективный результат обработки, структурирования и форматирования собранной его автором информации и предназначен, прежде всего, для использования в качестве источника для самостоятельной подготовки работы указанной тематики.
bmt: 0.00498
© Рефератбанк, 2002 - 2024